1.3分析方法
BOD5、COD、氨氮、硝氮、亚硝氮和总磷测定均参照国标方法测定.总有机碳(TOC)和TN使用总有机碳分析仪(TOC-VCPH/CPN,岛津)测定.多糖测定采用苯酚硫酸法,蛋白采用考马斯亮蓝法.污泥浓度(MLSS)采用重量法测定.DO和水温采用便携式溶解氧测定仪(YSI-550A).采用3D-EEM荧光光度计(HitachiF-7000)分析出水溶解性有机物质的组成,激发波长(Ex)为200~400nm,发射波长(Em)为240~500nm,狭缝宽度5nm,扫描速度1200nm˙min-1,光电倍增管PMT电压700V.
微生物种群分析采用454高通量测序法,具体实验方法如下.
1.3.1DNA提取与纯化
生物膜样品的DNA采用E.Z.N.A.土壤DNA提取试剂盒(OMEGA公司)进行提取,实验按照生产厂商提供的方法进行.
1.3.2PCR扩增
DNA样品采用16S rRNA通用引物(27F和533R)对细菌的V1~V3区域进行扩增. 前向引物(5′-GCC TTG CCA GCC CGC TCA GAG AGT TTG ATC CTG GCT CAG-3′)包含454B衔接子序列和细菌通用引物27F序列. 反向引物(5′-GCC TCC CTC GCG CCA TCA GNN NNN NNN NNT TAC CGC GGC TGC TGG CAC-3′)包含454A衔接子序列,随机组合的10个碱基标记每一种PCR产物和细菌通用引物533R序列.
PCR反应于20 μL体系中进行,包含0.4 μmol ˙L-1正向和反向引物,1 μL模板DNA,200 nmol ˙L-1 dNTP和1×FastPfu Buffer. 以不含DNA的PCR水来稀释. PCR反应程序设定为:94℃预变性2 min,95℃变性30 s,55℃退火30 s,72℃延伸30 s,共25个循环,最终72℃延伸5 min. 扩增产物用2%琼脂糖凝胶电泳检测. 扩增产物以AxyPrepTM凝胶回收试剂盒回收(AXYGEN公司).
1.3.3扩增产物检测、焦磷酸测序
扩增产物DNA浓度用Quant-iTPicoGreendsDNA试剂盒测定(Invitrogen公司),DNA样品以30μLTE缓冲液稀释,在微细胞比色皿加入等量2XPicoGreen工作溶液,总反应体积60μL.以465~485nm为激发波长,515~575nm为发射波长,采用TurnerBiosystemsTBS-380荧光光度计测定其荧光强度.
浓度定量测定后,纯化后的DNA,等摩尔比例加入到试管中.焦磷酸测序采用454GSFLXTitanium测序方法(罗氏),由上海美吉生物医药科技有限公司进行.在0.03水平进行OTU聚类和物种分类分析.以MOTHUR软件以及序列聚类软件Usearch4.0.38进行序列比较及分析.所比对的数据库为Silva106版.
2结果与讨论
2.1、DO对A/O反应器去除有机物和氮磷的影响
A/O反应器启动成功后稳定运行近半年的时间.A、B两组反应器内的A段和O的污泥浓度(MLSS)分别保持在3~4g˙L-1和5~6g˙L-1,MLVSS/MLSS的比值在71%~75%,污泥活性均较高.图2和图3分别为进、出水COD和氨氮浓度及其去除率随时间的变化.两个HRT下,A、B两组反应器出水的水质指标列于表2.可以看出,尽管进水的COD浓度波动较大,但COD的去除率保持稳定,A/O反应器具有良好的抗冲击性.
出水的BOD5均低于5mg˙L-1,说明A/O反应器对有机物的生物降解比较彻底.HRT为20h时出水COD的去除效果优于30h.在HRT为20h时,A组反应器出水的COD(72.5mg˙L-1±14.8mg˙L-1)略高于B组反应器出水(68.7mg˙L-1±14.6mg˙L-1),COD平均去除率分别为67.0%和68.8%,TOC的去除率分别为64.4%和69.1%.说明低DO浓度下运行对有机物的去除没有显著影响.
表2A、B反应器出水指标分析
图2进、出水COD浓度及其去除率随时间变化
图3进、出水氨氮浓度及其去除率随时间变化
反应器运行初期,低DO运行的A组反应器出水的氨氮浓度较高,说明硝化菌的活性降低.但经过3个月的运行后,两组反应器出水的氨氮浓度已经没有显著差别,氨氮的去除率均在90%以上.
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