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1.2 试验设计
取北京某污水处理厂缺氧池中的污泥接种,接种后反应器内污泥混合液悬浮固体(MLSS)浓度为3 544 mg/L,混合液挥发性固体(MLVSS)浓度为1 897 mg/L,MLVSS/MLSS为0.54。采用连续流进水方式,根据实际反渗透浓水进水中NO−3O3--N、NO−2O2--N和TN的浓度变化特征,分4个阶段(Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ和Ⅳ)研究底物浓度对MBBR反硝化效能的影响。用加热棒控制温度为24~27 ℃,HRT为12 h,填料填充率为30%,采用电动搅拌器搅拌使填料和污泥保持悬浮状态。适当补充甲醇作为外加碳源,使进水COD/TIN为2.9~4.8,反应器中溶解氧浓度低于0.5 mg/L。各阶段进水水质见表2。
1.3 水质分析方法
测定的水质指标、分析方法和所用仪器如表3所示。每4 d取样1次,水样经0.45 μm滤膜过滤后测定NH+4H4+-N、NO−2O2--N和NO−3O3--N浓度,静置后取上清液测定其他指标。试验中所用药品均为分析纯(国药集团化学试剂北京有限公司)。
1.4 微生物及分子生物学分析
在每个阶段稳定期,取适量填料和底泥进行生物量、扫描电镜(SEM)及荧光定量PCR(qPCR)测定。
生物量测定:取一定量各阶段稳定期的反硝化MBBR填料浸于1 mol/L的NaOH溶液中,经80 ℃水浴30 min后,100 W超声1 min,涡旋振荡30 s,测定溶液中SS浓度[6]。
SEM观察[15]:取各阶段稳定期反硝化MBBR填料,用无菌剪剪至5 mm×5 mm的小块,用2.5%中性戊二醛固定,磷酸缓冲液清洗,乙醇梯度脱水,进行临界点干燥和喷金后,置于SEM电镜下观察。
qPCR测定:在ABI 7500型荧光定量PCR仪(Life Technologies,美国)对各阶段稳定期的填料生物膜和底泥样品进行qPCR分析,对16S rRNA基因、厌氧氨氧化细菌基因(Anammox)和反硝化中编码硝酸盐还原酶功能基因(narG)、编码cytoome cd1亚硝酸盐还原酶基因(nirK)、编码copper亚硝酸盐还原酶基因(nirS)和编码N2O还原酶基因(nosZ)的拷贝数进行定量分析,各目的基因的引物序列见表4。
用土壤基因组DNA提取试剂盒(MP Biomedicals,美国)提取生物膜和底泥样品的DNA。20 μL的qPCR混合反应物由16.4 μL的2X Taq Plus Master Mix(Vazyme Biotech,美国),2 μL的模板DNA,0.8 μL的正向引物和0.8 μL的反向引物组成。qPCR的反应条件:95 ℃预变性5 min;在不同温度下(16S rRNA基因、narG和nirS,60 ℃;nirK,54 ℃;nosZ,56 ℃;Anammox,55 ℃)变性30 s,共40个循环;最后72 ℃延伸40 s。每个样品设3个平行样。用Nano Drop 2000 分析仪(Thermo Fisher Scientific, 美国)监测构建质粒的数量与质量。以10倍梯度稀释反硝化细菌及各功能基因重组质粒进行qPCR(博日9600Plus,中国)检测,获得16S rRNA基因、Anammox及各功能基因标准曲线。R2为0.994 9~0.999 9,扩增效率为84.8%~99.7%。
2 结果与讨论
2.1 底物浓度对反硝化MBBR脱氮效能的影响
2.1.1 底物浓度对去除NO−3O3--N的影响
2.1.1.1 进水TN和NO−3O3--N浓度
由表2可知,Ⅲ阶段相对于Ⅱ阶段,进水NO−2O2--N和NH+4H4+-N浓度基本未变。由图2(a)可见,进水NO−3O3--N和TN浓度分别由(8.70±6.34)和(28.43±5.69)mg/L增至(24.23±8.69)和(44.10±7.37)mg/L时,NO−3O3--N去除率分别为83.9%±4.01%和80.69%±7.46%;反硝化速率由(15.48±3.80)g/(m3·d)增至(44.58±3.67)g/(m3·d)。可见反应器内微生物对NO−3O3--N和TN浓度增加适应良好,对NO−3O3--N去除率影响不大,反硝化率随浓度增加而增加。在生物活性炭硫反硝化脱氮系统中,当进水NO−3O3--N浓度为10~40 mg/L时,NO−3O3--N去除率基本未变化[22],与本研究结果一致,但其NO−3O3--N去除率在93%以上,高于本研究,可能与反渗透浓水水质复杂有关。
用土壤基因组DNA提取试剂盒(MP Biomedicals,美国)提取生物膜和底泥样品的DNA。20 μL的qPCR混合反应物由16.4 μL的2X Taq Plus Master Mix(Vazyme Biotech,美国),2 μL的模板DNA,0.8 μL的正向引物和0.8 μL的反向引物组成。qPCR的反应条件:95 ℃预变性5 min;在不同温度下(16S rRNA基因、narG和nirS,60 ℃;nirK,54 ℃;nosZ,56 ℃;Anammox,55 ℃)变性30 s,共40个循环;最后72 ℃延伸40 s。每个样品设3个平行样。用Nano Drop 2000 分析仪(Thermo Fisher Scientific, 美国)监测构建质粒的数量与质量。以10倍梯度稀释反硝化细菌及各功能基因重组质粒进行qPCR(博日9600Plus,中国)检测,获得16S rRNA基因、Anammox及各功能基因标准曲线。R2为0.994 9~0.999 9,扩增效率为84.8%~99.7%。
2.1.1.2 进水NO−2O2--N浓度
由表2可知,Ⅱ阶段相对于Ⅰ阶段,进水TN浓度基本未变,但由图2(b)可见,NO−3O3--N浓度减少6.20 mg/L,NO−2O2--N浓度增加10.00 mg/L;Ⅲ阶段相对于Ⅳ阶段,进水TN浓度基本未变,NO−3O3--N浓度减少5.62 mg/L,NO−2O2--N浓度增加6.45 mg/L。由2.1.1.1节可知,进水NO−3O3--N浓度对NO−3O3--N去除率影响不大,因此只考虑NO−2O2--N浓度对NO−3O3--N去除的影响。
Ⅱ阶段相对于Ⅰ阶段,NO−3O3--N去除率降低5.86个百分点,反硝化速率降低12.19 g/(m3·d);Ⅲ阶段相对于Ⅳ阶段,NO−3O3--N去除率降低4.52个百分点,反硝化速率降低8.21 g/( m3·d)。由以上分析可知,随着NO−2O2--N浓度的增加,NO−3O3--N去除率和反硝化速率均下降。王少坡等[23]报道在进水(NO−3O3--N+ NO−2O2--N)浓度一定时,NO−2O2--N占比越高,反硝化结束时反应器内pH越高;而反应器内pH升高可能会超出反硝化最适pH,从而降低NO−3O3--N去除率和反硝化速率[24]。王亚宜等[25]研究发现,当NO−2O2--N浓度由5.5 mg/L增至15.0 mg/L时,序批式活性污泥反应器反硝化速率降低。
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